CEEVEC

Les plateformes associées

Administrateur technique — 2026-03-19T17:00:00Z

Le CEEVEC s'appuie sur plusieurs plateformes technologiques réparties sur le territoire.

Cytométrie en flux

Plateforme AMUTICYT

Stéphane ROBERT, Responsable plateforme
Lea PLANTUREUX, Ingénieur plateforme

La plateforme propose une expertise internationale sur la détection des vésicules extracellulaires par cytométrie en flux, avec une démarche d'accompagnement technologique pour une caractérisation optimale de ces biomarqueurs biologiques. Elle poursuit les travaux d'optimisation et de R&D sur ce paramètre.
En parallèle, AMUTICYT propose des phénotypages cellulaires humains et murins, jusqu'à 21 paramètres, du tri cellulaire et vésiculaire, de la cytométrie d'image en flux (unique sur Marseille).
Elle est ouverte en prestation de service à l'ensemble de la communauté académique locale, nationale et internationale mais aussi au monde socio-économique.

Plateforme Mica

Julie Cazareth ,Responsable plateforme

Le service d'Imagerie Cellulaire et de Cytométrie en flux de l'IPMC, membre fondateur de la plateforme MICA labellisée IBiSA, met à disposition des équipements de pointe en microscopie et cytométrie, associée à une expertise en analyse d'images et de données pour la communauté scientifique. Nous proposons une approche intégrée de l'étude des vésicules et petites particules, combinant cytométrie spectrale avancée (Cytek Aurora équipé d'un module vESP), optimisation des échantillons et technique de microscopie à super-résolution (Leica SP8 STED).

Protéomique

Luc Camoin & Stéphane Audebert, CRCM-Marseille

Plateforme PAB-Azur-proteomique

Anne-Sophie GAY, Responsable plateforme

La plateforme d'analyse des biomolécules (PAB-Azur), située à l'Institut de Pharmacologie Moléculaire et Cellulaire à Sophia Antipolis, est spécialisée dans la caractérisation des biomolécules par spectrométrie de masse. PAB-Azur met son expertise à disposition de la communauté scientifique élargie, incluant des laboratoires publics et privés, dans les vastes domaines de la biologie et de la chimie. L'un de ses domaines d'expertise concerne l'analyse protéomique, notamment :

l'identification de protéines dans des mélanges complexes,
la quantification relative sans marquage des protéines à l'aide d'approches ciblées et non ciblées,
la caractérisation des modifications post-traductionnelles.

Lipidomique

Plateforme PAB-Azur-lipidomique

Delphine DEBAYLE, Responsable plateforme

La plateforme PAB-Azur-lipidomique, spécialisée en métabolomique et lipidomique, met en œuvre des technologies avancées de spectrométrie de masse pour caractériser les petites molécules et les lipides dans des matrices biologiques complexes. Elle développe des approches innovantes pour explorer les mécanismes biologiques et soutenir des projets de recherche en santé, environnement et biotechnologies.

Microscopie électronique

Plateforme de Microscopie Électronique de l'IBDM

Nicolas BROUILLY, Responsable plateforme
Fabrice RICHARD, Personnel technique
Aïcha AOUANE, Personnel technique

La plateforme de Microscopie Électronique de l'Institut de Biologie du Développement de Marseille est ouverte aux utilisateurs du CEEVEC qui souhaitent observer l'ultrastructure de leurs préparations d'EVs par la technique de coloration négative. Nous pouvons également réaliser des expériences d'enrobage et/ou d'immunomarquage pour localiser une molécule d'intérêt à l'intérieur ou sur les vésicules extra-cellulaires.
Au-delà de cette compétence en préparation de grilles de vésicules extra-cellulaires, la plateforme peut aussi préparer des échantillons de cellules in vitro ou de tissus pour l'observation par microscopie électronique 2D et 3D à haute résolution (Tomo-TEM) ou sur de grands volumes (SBF-SEM).
Pour en savoir plus et nous contacter : https://www.ibdm.univ-amu.fr/team/electron-microscopy/

Génération de Nanobody

Alain Roussel, IMM-Marseille

Les membres du réseau

Administrateur technique — 2026-02-24T17:14:00Z

Le CEEVEC réseau Azur-Provence fédère aujourd'hui 40 équipes dans 20 centres (CRCM, C3M, iBV, IMM, IRCAN, CiNAM, IBDM, ISA, IPMC, C2VN, UNIS, INT, CRCL, INRAE, AFMB, INMED, LAI, MeliS, INP, LISM).
Ces équipes couvrent un large spectre d'expertises, allant de la biologie fondamentale aux approches cliniques et translationnelles.

Centre de Recherche en CardioVasculaire et Nutrition

Endothélium, cellules circulantes et maladies vasculaires dirigé par Françoise Dignat-George et Laurence Panicot-Dubois
Ghayad Sandra, Lacroix Romaric, Sabatier Florence, Velier Mélanie, Chareyre Corinne, Conca Analucia, Huber Marie, Evelyne Abdili, Amandine Bonifay

New endothelial molecular targets dirigé par Marcel Blot-Chabaud et Stéphane Burtey
Aurélie Leroyer

Centre Méditerranéen de Médecine Moléculaire

Cancer, Métabolisme et Environnement (CAMEEN) dirigé par Frédéric Bost et Nathalie Mazure
Pascale Peraldi

Microenvironnement, Signalisation et Cancer (MicroCAN) dirigé par Sophie Tartare-Deckert

Centre Interdisciplinaire de Nanoscience de Marseille

Biomolecules and Biomaterials dirigé par Ling Peng
Christina Galanakou

Centre de recherche en cancérologie de Marseille

Dialogue Cellules Stromales/Tumorales et Reprogrammation Métabolique dans les Cancers du Pancréas dirigé par Sophie Vasseur et Richard Tomasini
Christophe Rovera, Djamila Belghoula, Fabienne Guillaumond, Georgios Efthymiou, Claudio Montenegro, Manon Grelet, Maria-eduarda Azevedo

Vésicules Extracellulaires : Mécanismes de Signalisation et Ingénierie Thérapeutique dirigé par Pascale Zimmermann
Rania Ghossoub, Lauriane Goullieux, Sylvie Thuault

Glycosylation, interfaces cellulaires et thérapies dirigé par Frédéric Bard
Saba Goodarz

Dommages de l'ADN et pathologies sanguines dirigé par Christophe Lachaud
Laura Braud, Raphaël Leblanc

Biologie moléculaire intégrative dans l'hématopoïèse et la leucémie dirigé par Estelle Duprez
Dominique Payet-Bornet, Charlotte Savey

Signalisation, Hématopoïèse et Mécanismes de l'Oncogenèse dirigé par Paulo De Sepulveda
Albane Chiche

Immunité et Cancer dirigé par Jacques Nunès
Alexia Fleurial, Geoffrey Guittard

Recherche Translationnelle et Thérapeutique dans le Cancer du Pancréas dirigé par Nelson Dusetti
Nicolas Fraunhoffer

Anticorps Thérapeutiques et Immunociblage (ATI) dirigé par Patrick Chames

Institut de Biologie Valrose

Death receptors signalling and cancer therapy dirigé par Anne-Odile Hueber
Laurent Gagnoux

Regulation of ion channels in cancer dirigé par Olivier Soriani

Institut NeuroPhysiopathologie

NOSE. Nasal Olfactory Stemness and Epigenesis dirigé par Gaëlle Guiraudie-Capraz

Institut de Pharmacologie Moléculaire et Cellulaire

Physiopathologie moléculaire des phospholipases A2 et de leurs médiateurs dirigé par Gérard Lambeau
Agnès Petit-Paitel, Christine Payre, Franck Bihl, Sarah Salame

Les protéines Arf : transport membranaire, morphologie épithéliale et cancer dirigé par Michel Franco
Laetitia Della-Croce, Isabelle Mus-Veteau

Physiopathologie des Maladies d'Alzheimer et de Parkinson dirigé par Cristine Alves Da Costa et Mounia Chami
Frédéric Checler, Inger Lauritzen, Anaïs Bini, Elodie Delaquaize

Mécanismes de régulation de l'expression génique en physiopathologie dirigé par Enzo Lalli
Carmen Ruggiero

Institute for Research on Cancer and Aging of Nice

Epithelial homeostasis & tumourigenesis dirigé par Chloé Féral

Institut Sophia Agrobiotech

Multitrophic Interactions and Biocontrol dirigé par Jean-Luc Gatti

Réseau d'équipements dédiés aux vésicules extracellulaires

Administrateur technique — 2026-02-24T17:13:00Z

Le réseau du CEEVEC initie un projet visant à recenser les équipements dédiés à la production, à la purification et à la caractérisation des EVs dans la région. L'objectif est d'identifier les infrastructures disposant de ces technologies et de déterminer celles accessibles aux laboratoires du réseau CEEVEC. Cette initiative vise à faciliter l'accès aux équipements et à encourager le recours à des installations de proximité pour les expérimentations.

Pour mener à bien cette initiative, nous avons mis en place un formulaire destiné à recueillir ces informations. Nous vous remercions de le remplir avec soin afin de nous aider à constituer une base de données complète et à favoriser les collaborations au sein de la communauté scientifique.
Contribuer au recensement

Équipements recensés

Administrateur technique — 2026-02-24T17:13:00Z

Liste des équipements du réseau :

Production

Culture cellulaire

FiberCell

Le système FiberCell repose sur la technologie de bioréacteurs à fibres creuses, permettant la culture cellulaire en perfusion dans un environnement tridimensionnel proche des conditions physiologiques. Les cellules sont cultivées dans un compartiment extracapillaire, tandis que le milieu de culture circule en continu à travers des fibres semi-perméables, assurant un apport constant en nutriments et une élimination efficace des déchets métaboliques.

Cette configuration permet d'atteindre des densités cellulaires très élevées, largement supérieures aux cultures en monocouche classiques, tout en maintenant la viabilité et la fonctionnalité cellulaire sur de longues périodes. Le système est particulièrement adapté à la production de protéines recombinantes, d'anticorps, ou encore d'exosomes et autres vésicules extracellulaires.

L'environnement contrôlé en perfusion continue favorise la stabilité des conditions de culture (pH, nutriments, oxygénation), réduisant le stress cellulaire et améliorant la reproductibilité des productions. L'ensemble du procédé est relativement automatisable et permet des récoltes concentrées et régulières de produits biologiques d'intérêt.

Formulation de nanoparticules

NanoAssemblr Ignite, Cytiva

Le NanoAssemblr Ignite (Cytiva) est un système de microfluidique contrôlée dédié à la production rapide et reproductible de nanoparticules lipidiques (LNP) pour des applications en recherche et en développement préclinique.
L'instrument repose sur la technologie de mélange microfluidique NxGen, qui permet une formation précise et homogène des LNP en contrôlant finement les paramètres de flux, le ratio aqueux/organique et les conditions de formulation. Il fonctionne avec de faibles volumes d'échantillon, généralement compris entre 0,5 et 2 mL, ce qui facilite l'optimisation de formulations tout en limitant la consommation de réactifs.

Le système accepte une large gamme de lipides et de cargos nucléiques (ARNm, ADN, siRNA), et permet d'obtenir des particules dont la taille est typiquement comprise entre 20 et 150 nm selon les conditions de mélange. Grâce à son interface logicielle intuitive, à la reproductibilité de ses débits et à la standardisation du procédé, le NanoAssemblr Ignite offre une plateforme robuste pour le développement de formulations LNP, depuis le criblage initial jusqu'à la mise au point de protocoles transférables vers des systèmes de plus grande capacité.
Détail de l'équipement

Caractérisation

Nanoparticle Tracking Analysis (NTA)

ZetaView, Particle Metrix

Le ZetaView (Particle Metrix) combine la Nanoparticle Tracking Analysis (NTA) avec une imagerie multi‑canal pour mesurer la taille, la concentration et la fluorescence de nanoparticules en suivant leur mouvement brownien.
L'instrument permet d'analyser des particules généralement comprises entre 30 et 1000 nm, selon la configuration optique et les conditions d'acquisition. Il fonctionne avec de faibles volumes d'échantillon, typiquement de l'ordre de 1 mL, répartis sur plusieurs positions de mesure pour améliorer la représentativité et la reproductibilité.

Le système intègre plusieurs lasers d'excitation (notamment 405 nm, 488 nm, 520 nm, 640 nm selon les modules) associés à des canaux de détection fluorescente dédiés, permettant l'analyse de sous‑populations marquées et la caractérisation multiparamétrique des vésicules extracellulaires. Grâce à son balayage automatisé sur plusieurs champs et à son logiciel d'analyse avancé, le ZetaView offre une quantification robuste, une bonne sensibilité et une excellente reproductibilité pour l'étude des nanoparticules biologiques.
Détail de l'équipement

Liste des équipements de la plateforme :

Consulter la rubrique dédiée.

Isolation & purification

Ultracentrifugeuse

Optima XPN, Beckman ; Optima MAX-XP, Beckman

L'ultracentrifugeuse Beckman permet l'isolement des vésicules extracellulaires par ultracentrifugation différentielle et en gradient de densité, deux approches de référence pour obtenir des préparations de haute pureté.

Capable d'atteindre des vitesses supérieures à 100 000 × g, elle sépare efficacement les particules en fonction de leur densité et de leur taille, tout en préservant leur intégrité.

Les rotors adaptés aux volumes faibles ou intermédiaires offrent une grande flexibilité selon le type d'échantillon et le protocole choisi. Le contrôle précis de la température garantit des conditions stables tout au long du processus, limitant les dégradations et assurant une excellente reproductibilité.

Cet équipement constitue ainsi un outil essentiel pour l'isolement robuste et standardisé des vésicules extracellulaires.

Nous disposons de deux types d'ultracentrifugeuse : la Optima XPN et l'Optima MAX-XP.
Détail de l'équipement

Chromatographie par exclusion stérique (SEC)

Colonnes qEV, Izon

Les colonnes de chromatographie par exclusion stérique (SEC) d'Izon sont conçues pour la séparation fine des vésicules extracellulaires et autres nanoparticules biologiques sur la base de leur taille hydrodynamique, en utilisant une matrice calibrée garantissant une résolution élevée.
Disponibles en différents formats (20 nm à 70 nm), elles permettent de traiter des volumes allant de quelques centaines de microlitres à plusieurs millilitres, tout en assurant une récupération efficace des particules. Chaque colonne est pré‑emballée avec une résine de grade analytique dont la porosité et la distribution des tailles sont strictement contrôlées, assurant une élution reproductible des fractions riches en vésicules extracellulaires et une élimination efficace des protéines solubles, lipoprotéines et autres contaminants de faible masse moléculaire.
Le système s'accompagne de schémas d'élution standardisés et de volumes de collecte définis, facilitant la comparaison inter‑expériences et la mise en place de protocoles harmonisés. Grâce à leur simplicité d'utilisation, leur calibrage rigoureux et leur compatibilité avec des applications en aval (quantification, analyse biophysique ou omique), les colonnes SEC d'Izon constituent un outil robuste et fiable pour l'obtention de préparations de vésicules extracellulaires de haute pureté.
Détail de l'équipement

Filtration à flux tangentielle (TFF)

Sartoflow, Sartorius

Sartoflow Smart (Sartorius) est un système de filtration tangentielle automatisé conçu pour la concentration et le diafiltrage de biomolécules dans des volumes de l'ordre de 0,5 à 10 L, idéal pour les procédés pilotes ou les petites productions. Il fonctionne avec des casette Sartocon de différents cut‑offs (1 kDa à 0,2 µm), permettant d'adapter précisément la séparation selon la taille des particules ou des macromolécules ciblées. Son architecture intègre une pompe péristaltique à débit contrôlé, des capteurs de pression en ligne et une régulation fine de la pression transmembranaire, assurant une filtration douce qui limite le colmatage et préserve l'intégrité des vésicules extracellulaires ou autres biomolécules sensibles. Le système gère automatiquement les cycles de concentration et de diafiltration, avec un suivi en temps réel des paramètres critiques et une interface intuitive facilitant la standardisation des protocoles.
Grâce à sa conception hygiénique, ses options de nettoyage en place et la reproductibilité offerte par ses modules calibrés, le Sartoflow Smart constitue une plateforme robuste et fiable pour des opérations de purification hautement contrôlées dans les bioprocédés GMP-like.
Détail de l'équipement

Caractérisation

Nanoparticle Tracking Analysis (NTA)

Nanosight NS300, Malvern Panalytical

Le NanoSight NS300 (Malvern) repose sur la technologie de Nanoparticle Tracking Analysis (NTA), qui mesure le mouvement brownien individuel des particules pour en déduire leur distribution en taille et de leur concentration.
Il permet une caractérisation reproductible de nanoparticules comprises entre 10 et 1000 nm, selon la configuration instrumentale. Son disque motorisé à six filtres et sa platine optique automatisée facilitent l'analyse multiparamétrique et garantissent un repositionnement précis après nettoyage. Le contrôle de température entièrement piloté par logiciel assure enfin des conditions d'acquisition stables et une fiabilité optimale des données.
Détail de l'équipement

Microfluidic Resistive Pulse Sensing (MRPS) – Analyse d'EV individuelles

ARC, Spectradyne

Le Spectradyne (ARC) repose sur la technologie Microfluidic Resistive Pulse Sensing (MRPS), qui mesure individuellement le passage de nanoparticules dans un micro‑canal pour déterminer avec précision leur taille et leur concentration à partir de 3 à 5 µL d'échantillon.
Selon la cartouche microfluidique utilisée, l'instrument permet de détecter des particules d'environ 50 à 2000 nm, avec une sensibilité élevée pour les plus petites tailles. Il intègre également des lasers d'excitation (notamment 488 nm et 642 nm) associés à des canaux de détection fluorescente dédiés, permettant l'analyse de sous‑populations marquées et l'étude multiparamétrique des vésicules extracellulaires.
Grâce à ses cartouches calibrées et à son acquisition automatisée, le système offre une excellente reproductibilité, une préparation minimale et une grande robustesse pour la caractérisation fine des nanoparticules biologiques.
Détail de l'équipement

Analyse protéique – Simple Western

Jess (ProteinSimple / Bio-Techne)

Le Jess (ProteinSimple) repose sur la technologie de Simple Western, une approche automatisée basée sur des immunoessais en capillaires, combinant électrophorèse et détection immunologique des protéines. Les protéines sont séparées selon leur masse moléculaire par électrophorèse capillaire, puis immobilisées directement dans les capillaires avant d'être détectées via des anticorps spécifiques.

Ce système permet une analyse quantitative et reproductible des protéines sur une large gamme de masses moléculaires (environ 2 à 440 kDa), avec une sensibilité élevée pouvant atteindre le niveau du picogramme. L'automatisation complète du procédé (séparation, incubations, lavages et détection) réduit fortement la variabilité expérimentale et le temps de manipulation, avec des résultats obtenus en quelques heures.

Les capacités de détection en chimiluminescence et fluorescence permettent des analyses multiplexées, ainsi qu'une normalisation directe des protéines totales dans le capillaire, garantissant des données fiables et comparables.

Détail de l'équipement

Protocole Book

Administrateur technique — 2026-02-24T13:06:00Z

Méthodes & Guides Techniques

Notre Protocole Book regroupe l'ensemble des procédures techniques et des recommandations méthodologiques. Il constitue une référence structurée contribuant à la reproductibilité, à la conformité scientifique et à la qualité des résultats obtenus.

Il comprend notamment :

Protocoles généraux de production des vésicules extracellulaires
Méthodes d'isolement et de purification
Bonnes pratiques de manipulation
Guides d'utilisation détaillés de nos équipements

Comment y accéder ?

Faites votre demande auprès du CEEVEC via la page « Nous contacter » du site internet. Une fois votre demande reçue, une invitation vous sera envoyée par mail pour accéder à la plateforme Résana ainsi qu'au Protocole Book du CEEVEC.

Nos actions clés pour soutenir l'innovation

Administrateur technique — 2026-02-24T13:03:00Z

Dans le cadre de son soutien dans le domaine des vésicules extracellulaires (VEs), le CEEVEC (Centre d'Expertises et d'Expérimentations sur les Vésicules ExtraCellulaires) lance cet appel à projet afin de permettre aux équipes de recherche de mener des études exploratoires ou de leur proposer un soutien technologique. Ce programme vise à favoriser l'innovation, l'acquisition de nouvelles connaissances et à stimuler la collaboration entre les chercheurs académiques.

Recherche exploratoire : Ce type de projet permet à des équipes n'ayant pas ou peu d'expérience dans le domaine des VEs de mener des expériences préliminaires afin d'évaluer l'impact des VEs dans leur projet de recherche.
Soutien technologique : Ce type de projet permet à des équipes expérimentées dans le domaine des VEs mais ne disposant pas d'un (ou plusieurs) équipement(s) spécifique(s) de pouvoir approfondir leur projet de recherche à l'aide d'outils dont dispose le CEEVEC et les plateformes associées.

Les dossiers soumis sont évalués par un comité scientifique sur la base de critères prédéfinis. Les projets retenus bénéficient d'une prise en charge financière et/ou expérimentale des prestations au sein de la plateforme du CEEVEC et des plateformes associées, avec une mise en œuvre organisée en coordination avec les équipes concernées.

Consulter les lauréats

Nos actions clés pour dynamiser le réseau

Administrateur technique — 2026-02-24T13:03:00Z

Mutualisation des ressources

Recensement des équipements régionaux afin de faciliter l'accès aux infrastructures, optimiser leur utilisation et renforcer les synergies entre équipes.
Consulter les équipements dans le réseau

Animation scientifique et événements

Organisation annuellement d'événements scientifiques dans le but de partager les avancées, favoriser les échanges entre experts et stimuler les collaborations autour des vésicules extracellulaires.

Kick-off 2024 – Saint-Raphaël : événement de lancement de l'action structurante CEEVEC. Cet événement a marqué le lancement officiel du réseau pour l'année 2024, réunissant l'ensemble des membres afin de présenter les objectifs, les projets prioritaires et les ressources disponibles. Il a offert un cadre idéal pour privilégier les échanges entre chercheurs, stimuler les collaborations interdisciplinaires et renforcer la cohésion au sein de la communauté CEEVEC.
Matching Day 2025 – Valbonne : Cet événement a rassemblé près de 70 participants, venus partager leurs travaux, découvrir les avancées des projets soutenus par le consortium, et échanger autour de recherches innovantes. Nous avons également eu le plaisir d'accueillir de nouveaux membres enthousiastes à l'idée de rejoindre les actions portées par le CEEVEC, enrichissant ainsi les synergies et renforçant la dynamique de notre réseau.
Matching Day 2026 - Marseille : Cette journée scientifique s'est tenue le 26 mars 2026 et a rassemblé une large communauté de participants venus partager leurs travaux et découvrir les projets soutenus par le réseau. L'événement a permis de créer de nouvelles synergies, de favoriser les échanges autour de recherches innovantes et d'accueillir de nouveaux membres motivés à contribuer activement aux actions du CEEVEC, consolidant ainsi la dynamique de notre réseau.

Communication et dissémination de l'information

Publication mensuelle d'une newsletter avec à chaque édition, une mise en lumière des équipes et plateformes de la région, les nouveautés, les événements à venir et les avancées scientifiques.
Via cette newsletter, notre objectif est simple : créer un espace d'échange et d'entraide pour le CEEVEC Réseau Azur Provence. Vous avez une offre d'emploi à diffuser ? Un événement à partager ? Une publication que vous aimeriez mettre en lumière ? Faites-nous signe et nous serons ravis de relayer vos initiatives auprès du réseau !

Renforcement de la visibilité

Interventions lors de congrès ou dans des laboratoires de la région pour faire connaître le réseau, fédérer les membres et élargir sa communauté.

De plus, le réseau est en lien avec la Société Française des Vésicules Extracellulaires (FSEV). Cette collaboration permet de renforcer la visibilité du réseau, d'assurer une cohérence avec les initiatives nationales et de développer des partenariats scientifiques structurants.
https://fsev.eu/